链格孢SHMCCD65127-醋酸醋杆菌-Heinz小体染色液(耐尔蓝法)

通常将 1 μL 的 6×聚蔗糖凝胶上样缓冲液 III 与 5 μL 的核酸样品混合。

在分子生物学研究中，长片段DNA扩增是许多实验的关键步骤，但传统PCR方法在扩增较长片段时常常面临效率低、特异性差等问题。Ultra-Long Master Mix (2×) (Without Dye)的出现，为这一难题提供了高效的解决方案。 Ultra-Long Master Mix (2×) (Without Dye)是一种专为长片段DNA扩增设计的预混反应体系。它以Ultra-Long DNA Polymerase为核心，这种聚合酶融合了多种酶的特性，能够在单次反应中高效扩增长达40 kb甚至更长的DNA片段。这种能力使其在基因组学研究、全基因合成以及复杂基因组区域的分析中具有无可比拟的优势。 该Master Mix的“2×”浓度设计意味着实验人员只需将模板DNA、引物和水加入其中，即可快速配制好反应体系。这种预混液不仅简化了操作流程，还减少了人为误差，确保了反应体系的均一性和稳定性。此外，无染料配方为后续实验提供了更大的灵活性。实验人员可以根据需要选择是否添加染料，或者直接用于下游应用，如克隆、测序或无染料的凝胶电泳分析。

采用新一代抗体修饰的TaqDNA聚合酶和一步法专用温启动逆转录酶，结合优化的缓冲液体系显著提高了灵敏

λ DNA HindIII + EcoRI是一种常用的DNA分子量标准，广泛应用于琼脂糖凝胶电泳中，用于估算DNA片段的大小。它是通过将λ噬菌体DNA用HindIII和EcoRI两种限制性内切酶完全酶切后获得的，具有明确的片段大小分布。产品特性片段组成：λ DNA HindIII + EcoRI Marker由13条双链DNA条带组成，片段大小范围从125 bp到21,226 bp。即用型设计：已预混1×上样缓冲液，可直接用于凝胶电泳。稳定性：室温保存一个月带型无变化，但建议低温保存以防止核酸酶污染。使用方法电泳条件：凝胶浓度：建议使用0.5%-1.0%的琼脂糖凝胶。电泳缓冲液：1×TAE或0.5-1×TBE。电压：6-8 V/cm，电泳时间30-60分钟。热处理：使用前建议在65℃水浴中加热5分钟，然后在冰浴中冷却3分钟，以避免COS位点的片段结合。上样量：根据加样孔宽度，取2-5 µL加入凝胶加样孔中。染色与观察：电泳结束后，使用溴化乙锭（EB）或其他DNA染料染色，在紫外灯下观察条带。

3×甲酰胺凝胶上样缓冲液作为一种高效的辅助试剂，为核酸电泳提供了重要的支持。

碱性凝胶加样缓冲液(6×)是一种6倍浓缩的DNA上样缓冲液，专为碱性琼脂糖凝胶电泳设计。它以溴酚蓝和二甲苯青FF为指示剂，稀释至1×后比重较大，加样后易下沉，颜色清晰可见，便于电泳指示。产品特性主要成分：溴甲酚绿、二甲苯青FF、Ficoll 400、NaOH和EDTA。保存条件：室温避光保存，有效期为12个月。用途：主要用于碱性琼脂糖凝胶电泳。使用方法稀释：将6×碱性凝胶加样缓冲液与DNA样品按1:5的比例混合，稀释至1×使用。电泳操作：将混合后的样品加入凝胶加样孔中，进行电泳。注意事项分装使用：如果每次使用量较小，建议分装后使用，避免反复冻融。 避免污染：操作时需佩戴实验服和一次性手套，以确保安全。开封后尽快使用：试剂开封后应尽快使用，以防影响后续实验效果。碱性凝胶加样缓冲液(6×)凭借其高效、稳定和清晰的指示特性，成为碱性琼脂糖凝胶电泳实验中的理想选择。

6×DNA 在不同浓度的琼脂糖凝胶中，溴酚蓝和二甲苯青的迁移速率稳定，为实验提供可靠的参考

DL2000 DNA Marker是一种广泛应用于琼脂糖凝胶电泳的DNA分子量标准，由特定长度的双链DNA片段组成，可用于估算DNA片段的大小。产品特性DL2000 DNA Marker通常包含6条双链线状DNA条带，分别为100 bp、250 bp、500 bp、750 bp、1000 bp和2000 bp。其中，750 bp条带的浓度通常较高（约100 ng/5 µL），便于观察和作为参考。该Marker已预混有1×Loading Buffer，可直接用于电泳，使用方便。使用方法 电泳条件：建议在1.0% - 2.0%的琼脂糖凝胶中使用，电泳缓冲液可选用1×TAE或0.5 - 1×TBE。电压一般控制在5 - 10 V/cm，电泳时间根据凝胶浓度和电压调整。 上样量：通常每次取5 µL加入凝胶加样孔中。如果加样孔较宽，可适当增加上样量。 染色与观察：电泳结束后，使用溴化乙锭（EB）或其他DNA染料染色，然后在紫外灯下观察电泳条带。保存条件短期保存：4℃可保存6个月。长期保存：-20℃可保存1 - 2年。避免反复冻融：反复冻融可能导致条带降解，影响电泳效果。

SYBR Green I是一种高灵敏度的荧光染料，广泛应用于核酸电泳和定量PCR等领域。

核酸内切酶VIII（Endonuclease VIII，Endo VIII）是一种具有N-糖基化酶活性和AP-裂解酶活性的DNA损伤修复酶，广泛应用于基因损伤修复研究和相关生物技术领域。 作用原理 核酸内切酶VIII能够识别双链DNA上受损的嘧啶碱基，并在其N-糖基化酶活性作用下切除这些受损碱基，产生一个脱嘌呤（AP）位点。随后，其AP-裂解酶活性会切割AP位点的3'和5'端，产生一个具有3'和5'磷酸的碱基缺口。这种酶能够识别并切除多种受损碱基，包括尿嘧啶、5,6-二羟基胸腺嘧啶、胸腺嘧啶乙二醇等。 产品特性 高纯度：核酸内切酶VIII经过重组表达，纯度高，无核酸外切酶、核酸内切酶以及RNase残留。 热失活：75℃加热10分钟可使酶失活。 反应条件：在10 mM Tris-HCl、75 mM NaCl、1 mM EDTA（pH 8.0 @ 25℃）的缓冲液中，37℃孵育。 应用场景 DNA损伤和修复研究：用于模拟和修复DNA损伤。 单细胞凝胶电泳（彗星试验）：用于检测DNA损伤。 NGS建库：在高通量测序建库中修复DNA损伤。 酶法合成DNA：释放DNA链。

在模拟污染实验中，dUTP/UDG防污染系统能够有效降解含尿嘧啶的DNA污染，避免了假阳性结果的出现

T7 Endonuclease I（T7EI）是一种来源于T7噬菌体的核酸内切酶，能够特异性识别并切割DNA中的错配碱基对、十字型结构DNA、Holliday结构或交叉DNA以及异源双链DNA。这种酶在基因编辑领域，尤其是CRISPR-Cas9技术中，被广泛用于检测基因突变和编辑效率。 功能与特性 错配识别：T7EI能够识别DNA中的不完全配对碱基对，并在错配位点的5'端切割第一、第二或第三个磷酸二酯键。 高特异性：该酶对特定DNA结构具有高度特异性，能够有效区分野生型和突变型DNA。 应用广泛：除了用于基因编辑效果的检测，T7EI还可用于分解四方向交叉DNA、检测或切割异源双链DNA、随机切割线性DNA进行shot-gun克隆。 在CRISPR基因编辑中的应用 在CRISPR-Cas9基因编辑中，T7EI常用于检测目标基因是否成功引入突变。具体步骤如下： PCR扩增：分别以野生型和突变型DNA为模板，扩增包含突变位点的DNA片段。 变性与退火：将PCR产物变性后退火，形成异源双链DNA。 酶切反应：加入T7EI，在37℃下反应15-30分钟，通过琼脂糖凝胶电泳检测酶切结果。

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