摩氏摩根氏菌MorganellamorganiiACCC1102-吡咯菌素伯克霍尔德氏菌SHMCCD50236-肯塔基沙门氏菌

Probe qPCR Mix (2×) 可用于定量分析基因表达水平的变化帮助研究人员深入理解基因调控

DNA Marker II是一种即用型的DNA分子量标准，广泛应用于琼脂糖凝胶电泳中，用于估算DNA片段的大小。它由6条线状双链DNA片段组成，条带大小分别为100 bp、300 bp、500 bp、700 bp、900 bp和1200 bp。其中，700 bp条带的浓度最高，约为100 ng/5 µL，其余条带浓度约为50 ng/5 µL。产品特性即用型设计：已预混1×Loading Buffer，可直接取2-5 µL进行电泳。清晰的电泳条带：条带大小准确，带型清晰锐利，稳定性好。适用范围：适用于1.0%-2.0%的琼脂糖凝胶电泳，不建议用于聚丙烯酰胺凝胶电泳。使用方法上样量：根据加样孔的宽度，取2-5 µL加入琼脂糖凝胶的加样孔中。每1 mm × 1 mm的加样孔上样1 µL；如果加样孔较宽，可适当增加上样量。电泳条件：凝胶浓度：建议使用1.0%-2.0%的琼脂糖凝胶。电泳电压：4-10 V/cm，电泳时间15-20分钟。染色与观察：电泳结束后，使用溴化乙锭（EB）或其他DNA染料染色，在紫外灯下观察条带。

SYBR Green qPCR Mix是一种高性能的qPCR试剂，凭借其高灵敏度,为生物学研究的工具

在分子生物学实验中，PCR技术是不可或缺的工具，而Hot-Start Taq DNA Polymerase则是这一技术中的一颗璀璨明珠。它以其独特的机制和卓越的性能，为PCR反应的精准性和特异性提供了强有力的保障。 传统的Taq DNA聚合酶在室温下就具有活性，这意味着在PCR反应开始之前，引物可能会与模板发生非特异性结合，导致背景产物的产生，从而影响实验结果的准确性。而Hot-Start Taq DNA Polymerase通过特殊的化学修饰或物理方法，解决了这一问题。它在室温下处于“关闭”状态，只有在高温下才会被激活，从而有效避免了非特异性扩增的发生。 Hot-Start Taq DNA聚合酶的激活机制通常基于两种方式。一种是通过化学修饰，如在酶的活性位点引入可逆的化学基团，这些基团在高温下被去除，从而恢复酶的活性。另一种是通过物理方法，如将酶与抗体结合，抗体在高温下变性失活，从而释放出具有活性的Taq酶。无论哪种方式，其核心目标都是确保Taq酶在PCR反应的变性阶段才开始发挥作用。

其中，750 bp条带的浓度最高，约为20 ng/μL，其余条带浓度约为10 ng/μL。

在分子生物学和生物化学研究中，DNA的完整性和准确性对于实验的成功至关重要。Uracil-DNA Glycosylase (UDG)，特别是来自大肠杆菌（E. coli）的UDG，是一种能够特异性识别并修复DNA中尿嘧啶（U）的酶。UDG (5U/µl)以其高效的修复能力和精准的特异性，成为了许多实验中不可或缺的工具。 UDG的作用机制 UDG是一种DNA修复酶，能够特异性识别DNA中的尿嘧啶（U），并将其从DNA链中移除。这种酶的作用机制基于其对尿嘧啶的高亲和力。在DNA合成过程中，尿嘧啶可能会由于脱氨反应或其他化学修饰而意外掺入DNA链中。UDG通过识别这些尿嘧啶，并将其从DNA链中切除，从而防止错误碱基的积累。这种修复过程是维持DNA完整性和基因组稳定性的重要机制。 UDG在实验中的应用 PCR反应中的防污染：在PCR实验中，UDG常用于防止引物二聚体的形成和非特异性扩增。通过在PCR反应前加入UDG，可以将引物中的尿嘧啶降解，从而避免引物在反应前的非特异性结合。这种方法被称为“热启动PCR”，能够显著提高PCR反应的特异性和灵敏度。

dNTP Mix是不可或缺的关键试剂，广泛应用于PCR扩增、cDNA合成、DNA测序、引物延伸反应等

T7 Endonuclease I（T7EI）是一种来源于T7噬菌体的核酸内切酶，能够特异性识别并切割DNA中的错配碱基对、十字型结构DNA、Holliday结构或交叉DNA以及异源双链DNA。这种酶在基因编辑领域，尤其是CRISPR-Cas9技术中，被广泛用于检测基因突变和编辑效率。 功能与特性 错配识别：T7EI能够识别DNA中的不完全配对碱基对，并在错配位点的5'端切割第一、第二或第三个磷酸二酯键。 高特异性：该酶对特定DNA结构具有高度特异性，能够有效区分野生型和突变型DNA。 应用广泛：除了用于基因编辑效果的检测，T7EI还可用于分解四方向交叉DNA、检测或切割异源双链DNA、随机切割线性DNA进行shot-gun克隆。 在CRISPR基因编辑中的应用 在CRISPR-Cas9基因编辑中，T7EI常用于检测目标基因是否成功引入突变。具体步骤如下： PCR扩增：分别以野生型和突变型DNA为模板，扩增包含突变位点的DNA片段。 变性与退火：将PCR产物变性后退火，形成异源双链DNA。 酶切反应：加入T7EI，在37℃下反应15-30分钟，通过琼脂糖凝胶电泳检测酶切结果。

dNTP Mix是一种由 dATP、dCTP、dGTP 和 dTTP 组成的等摩尔混合溶液

在分子生物学实验中，PCR技术是基因扩增的核心手段，而dNTP Mix（脱氧核苷三磷酸混合液）则是PCR反应的基石。dNTP Mix (25 mM each)以其高浓度和均衡的组分，为PCR反应提供了稳定而高效的原料支持。 dNTP Mix (25 mM each)是一种包含四种脱氧核苷三磷酸（dATP、dTTP、dCTP、dGTP）的混合溶液，每种dNTP的浓度均为25 mM。这四种dNTP是DNA合成的基本单元，它们在DNA聚合酶的催化下，按照碱基互补配对原则嵌入到新合成的DNA链中。高浓度的dNTP Mix能够确保PCR反应中有足够的原料供应，从而提高反应的效率和灵敏度。 在PCR反应中，dNTP的浓度对反应的特异性和准确性至关重要。过低的浓度可能导致反应效率低下，而过高的浓度则可能引发非特异性扩增或错误配对。dNTP Mix (25 mM each)经过精心优化，能够为PCR反应提供理想的原料浓度，确保反应在最佳条件下进行。此外，该混合液的均衡组分保证了四种dNTP的比例一致，避免了因某一种dNTP过量或不足而导致的扩增偏差。

这种染料在紫外光或可见光下均能发出明亮的绿色荧光，背景信号低，信噪比高，能够清晰地显示核酸条带。

Tris-乙酸电泳缓冲液(50×TAE, RNase free)是一种专为RNA电泳设计的高浓度缓冲液，经过RNase-free处理，能够有效避免RNA降解，确保电泳结果的可靠性。产品特性成分：主要由2M Tris-acetate、50 mM EDTA和DEPC处理水组成。工作液浓度：稀释50倍后的1×TAE工作液含有40 mM Tris-acetate和1 mM EDTA，pH值约为8.0。 无RNase污染：经过DEPC处理，确保无RNase污染，适用于RNA电泳。稳定性高：室温保存，有效期长达12个月。使用方法稀释：将50×TAE缓冲液用DEPC处理水稀释50倍，制备1×工作液。电泳操作：将稀释后的1×TAE缓冲液加入电泳槽中，确保缓冲液完全覆盖凝胶。加样后开始电泳，电泳条件根据实验需求调整。染色与观察：电泳结束后，使用合适的RNA染料（如EB或Goldview）染色。在紫外灯下观察RNA条带。保存与注意事项保存条件：室温保存，开封后建议尽快使用。避免RNase污染：使用时需佩戴无RNase手套，避免使用可能含有RNase的耗材。

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